總膽固醇（TC）含量測試盒

微量法 100T/96S

注意：正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。

測定意義：

TC包括游離膽固醇和膽固醇酯。TC是指組織中所有脂蛋白所含膽固醇之總和。

測定原理：

利用酯酶催化膽固醇酯水解生成游離膽固醇（FC）和游離脂肪酸（FFA），從而把膽固醇酯轉(zhuǎn)化為FC；進一步利用膽固醇氧化酶催化FC氧化，生成△4-膽甾烯酮和H2O2；最后利用過氧化物酶催化H2O2氧化4-氨基安替比林和酚，生成紅色醌類化合物；在500nm有特征吸收峰，其顏色深淺與TC含量成正比。

自備儀器和用品：

水浴鍋、可調(diào)式移液槍、酶標儀、96孔板。

試劑組成和配置：

試劑一：異丙醇100mL（自備）；

試劑二：液體20mL×1瓶，4℃保存；

試劑三：粉劑×1瓶，4℃保存；

試劑四：液體40μL×1瓶，4℃保存；

TC標準品：液體1mL×1支，0.5μmol/mL，4℃保存。

TC的提取：

1、組織中TC的提取：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿，8000g 4℃離心10min，取上清，即TC待測液。

2、細胞、細菌中TC的提取：先收集400-500萬細胞或細菌到離心管內(nèi)，棄上清，加1mL試劑一，超聲波破碎1min（強度20％，超聲2s，停1s），即TC待測液。

3、血清（漿）等樣品：直接測定。

測定操作：

1. /酶標儀預熱30 min，調(diào)節(jié)波長到500 nm。

2. TC工作液的配制：臨用前，吸取約0.8mL試劑二分別加入試劑三和試劑四瓶中，充分溶解后再全部轉(zhuǎn)移回試劑二瓶中，充分混勻，TC工作液置于37℃水浴10min。用不完的工作液4℃保存一周。

3. 標準管：依次在96孔板中加入20μL FC標準液和180μL TC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A標準管。

4. 測定管：依次在96孔板中加入20μL FC待測液和180μLTC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A測定管。

5. 空白管：依次在96孔板中加入20μL 試劑一和180μLTC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A測定管。

注意：標準管和空白管只需測定一次。

計算公式：

1. 血清（漿）中TC含量計算：

TC（μ mol /dL）=C標準液×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）×100

 =50×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）

C標準液：0.5μmol/mL；100 mL：1dL=100 mL。

2. 組織中TC含量計算：

(1)按樣本蛋白濃度計算

TC（μ mol / mg prot）= C標準液×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷Cpr

    = 0.5×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷Cpr

(2)按樣本質(zhì)量計算

TC（μ mol / g 鮮重）= C標準液×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷W

    = 0.5×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷W

C標準液：0.5μmol/mL；樣本蛋白濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g/mL

3. 細胞、細菌中TC含量計算：

TC（μ mol /104 cell）=C標準液×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷細菌或細胞（104 cell /L）

    =0.5×（A測定管-A空白管）÷（A標準管-A空白管）÷細菌或細胞（104 cell /L）

C標準液：0.5μmol/mL。

*低檢出限為1nmol/mL。

上海牧榮生物科技有限公司

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